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系統識別號 U0002-1802200802003400
DOI 10.6846/TKU.2008.00508
論文名稱(中文) 利用CD和NMR研究合成的神經胜肽片段hNPY【21-31】之結構
論文名稱(英文) Conformational studies of synthesized neuropeptide fragment hNPY[21-31] by CD and NMR.
第三語言論文名稱
校院名稱 淡江大學
系所名稱(中文) 化學學系碩士班
系所名稱(英文) Department of Chemistry
外國學位學校名稱
外國學位學院名稱
外國學位研究所名稱
學年度 96
學期 1
出版年 97
研究生(中文) 林嘉豪
研究生(英文) Chia-Hao Lin
學號 694170597
學位類別 碩士
語言別 繁體中文
第二語言別
口試日期 2008-01-17
論文頁數 126頁
口試委員 指導教授 - 李長欣
委員 - 陳佩燁
委員 - 陳銘凱
關鍵字(中) 二維核磁共振
圓二色光譜儀
神經胜肽
固相胜肽合成法
關鍵字(英) 2D NMR
CD
NPY
PP
SPPS
第三語言關鍵字
學科別分類
中文摘要
人類神經胜肽Y(Human Neuropeptide Y, hNPY)在水溶液中具有α-螺旋結構,且低濃度下結構為單體,高濃度時則為雙體。其結構有特定作用機制:單體下先與膜微脂粒(membrane micelle)結合後進一步與GPCRs(G protein-coupled receptors)作用。
固相胜肽合成法(Solid Phase Peptide Synthesis)合成hNPY片段序列(hNPY[21-31]),經由高效能液相層析儀純化,質譜儀確認分子量,再用圓二色光譜(Circular Dichroism)觀察不同比例TFE溶液下,二級結構的變化,選擇100%水溶液與50%TFE兩溶液做結構測量與討論。用二維核磁共振(two-dimensional NMR)的光譜: COSY、TOCSY、ROESY、NOESY、[1H, 13C]-HSQC及光譜判定(Assignment)和光譜循序判定(Sequential assignment),各別判定兩溶液之11個殘基質子與13碳的化學位移。經由NOE限制條件分別計算兩溶液之3D結構,100%水溶液呈現鬆散不規則結構,50%TFE溶液則在24Leu~28Asn出現α-螺旋結構。
配合CD、CSI(Chemical Shift Index)、NMR、結構計算,討論兩比例溶液之結構差異,並與NPY結構比較。
英文摘要
Human Neuropeptide Y(hNPY) has a well-defined α-helical structure in solution, and is monomer at low concentration, dimer at high concentration. It has specific binding mechanism: First, the monomer structure binds with membrane micelle, and further interacts with G protein-coulpled receptors(GPCRs).
We synthesize neuropeptide fragment hNPY[21-31] by solid phase peptide synthesis, purified by RP-HPLC and made sure the molecular weight by Mass. The conformation and dynamics of hNPY[21-31] in difference solvent condition is studied by CD and 2D NMR experiment.
2D NMR experiments of COSY, TOCSY, ROESY, NOESY, and [1H, 13C]-HSQC were acquired. With NOE restrained structural calculation, the major structure of hNPY[21-31] in 100% H2O is random coil and form regular α-helical structure between 24Leu and 28Asn in 50%TFE/50% H2O.
Combination of CD, NMR, and XPLOR molecular calculation, we can investigate the conformational difference between 100%H2O and 50%TFE /50%H2O, and compare with native NPY.
第三語言摘要
論文目次
目錄

一、緒論                                               1
1.1 NPY家族                                          1
1.2 NPY在水溶液與膜微脂粒中結構變化                  2
1.3 研究目的                                              3

二、原理                                               6
2.1固相胜肽合成法                                     6
2.2-1圓二色光譜儀測量                                    10
2.2-2 蛋白質或多胜肽之圓二色光譜	13
2.3 二維核磁共振原理	15
2.3-1 COSY光譜	16
2.3-2 TOCSY光譜	17
2.3-3 NOESY實驗	17
2.4化學位移指數	23

三、實驗之材料與方法	26
3.1材料	26
3.2方法	32

四、結果	45

五、討論	109

六、參考資料	123






























圖片索引
圖1.1: NPY家族序列與結構圖示。                           4
圖1.2: 左為bPP,右為pNPY之水溶液三級結構圖。            4
圖1.3:pNPY水溶液之兩種雙體結構。                 4
圖1.4: pNPY單體與micelle結合後之17個結構計算疊圖。        5
圖1.5: pNPY與micelle結合流程圖。                          5
圖2.1 :固相胜肽合成法示意圖。                              8 
圖2.2: 去除保護基之流程圖。                                9 
圖2.3: Ninhydrin Test反應機制。                              9   
圖2.4: 光之振動電場(E)與磁場(M)示意圖。                    12
圖2.5: 光通過平面極化器(polarized)之示意圖。                 12
圖2.6: 左、右旋圓偏極光之合成圖。                          13
圖2.7:蛋白質之各種二級結構在圓二色光譜儀上的吸收圖。       14
圖2.8: 二維核磁共振實驗脈衝序列之四個時期。                19
圖2.9: 演化期之t1 值線性增加圖示。                          19
圖2.10: 化學位移、脈衝、純量偶合之積運算子操作。           20
圖2.11:COSY之脈衝序列。                                20
圖2.12:TOCSY之脈衝序列。                               21
圖2.13:NOESY之脈衝序列。                               21
圖2.14: random coil中各胺基酸Hα化學位移範圍。             25
圖2.15: random coil中各胺基酸Cα、CO 、Cβ化學位移範圍。   25
圖3.1: 固相胜肽合成流程圖。                               37
圖3.2: Rink Amide AM Resin示意圖。                         38
圖3.3: 最左邊藍色區塊為N端Fmoc保護基。                 38
圖3.4: Pybop與HBTU結構圖。                              38
圖3.5: hNPY[21-31]在100%H2O中HPLC純化的光譜。	39
圖3.6: ESI+-Mass測得之hNPY[21-31]分子量。	40
圖4.1:hNPY[21-31]100%H2O到50%TFE之CD 疊圖。        54                        
圖4.2: hNPY[21-31] 60%TFE到100%TFE之CD 疊圖。	55
圖4.3:hNPY[21-31]之100%H2O與50%TFE 之CD 疊圖。      56
圖4.4: COSY 20個胺基酸自旋系統。	 57
圖4.5: hNPY[21-31] 100%水溶液Ala之TOCSY光譜判定。      58
圖4.6: hNPY[21-31] 100%水溶液Ser之TOCSY光譜判定。      59
圖4.7: hNPY[21-31] 100%水溶液Arg之TOCSY光譜判定。       60
圖4.8: hNPY[21-31] 100%水溶液Asn、His之光譜判定。        61
圖4.9: hNPY[21-31] 100%水溶液HSQC之His判定。           62
圖4.10:hNPY[21-31] 100%水溶Tyr之光譜判定。              63
圖4.11:hNPY[21-31] 100%水溶液HSQC之Tyr判定。  	 64
圖4.12: hNPY[21-31] 100%水溶液TOCSY之Ile判定。          65
圖4.13: hNPY[21-31] 100%水溶液TOCSY N H與其他質子訊號。 66
圖4.14: hNPY[21-31] 100%水溶液dαN(i,i+1)之NOE連結。       67
圖4.15: hNPY[21-31] 100%水溶液dβN(i,i+1)之NOE連結。	68
圖4.16: hNPY[21-31] 100%水溶液芳香環與質子間的NOE。       69
圖4.17: hNPY[21-31] 100%水溶液dβN(i,i+2)之NOE連結。	70
圖4.18: hNPY[21-31]100%水溶液dβN(i,i+3)之NOE連結。	71
圖4.19: hNPY[21-31]100%水溶液中所有NOE連結。             72
圖4.20: hNPY[21-31]100%水溶液TOCSY之NH和αH交叉峰。	73
圖4.21: hNPY[21-31]之[13C,1H]-HSQC光譜一。 	74
圖4.22: hNPY[21-31]在[13C,1H]-HSQC光譜二。                75
圖4.23: hNPY[21-31]在[13C,1H]-HSQC光譜三。  	76
圖4.24: hNPY[21-31]在[13C,1H]-HSQC光譜四。	77
圖4.25:hNPY[21-31] 50%TFE COSY之Ala光譜判定。          80
圖4.26:hNPY[21-31] 50%TFE COSY之Ser光譜判定。            81
圖4.27: hNPY[21-31] 50%TFE COSY之Arg光譜判定。	82
圖4.28: hNPY[21-31] 50%TFE COSY之Asn、His之光譜判定。    83
圖4.29: hNPY[21-31] 50%TFE HSQC之His判斷。              84
圖4.30: hNPY[21-31] 50%TFE Tyr之TOCSY光譜判定。         85  
圖4.31: hNPY[21-31] 50%TFE HSQC之Tyr判斷。   	86
圖4.32: hNPY[21-31] 50%TFE Ile與Leu之光譜判斷。	87
圖4.33: hNPY[21-31] 50%TFE COSY N H與其他質子訊號。	88
圖4.34: hNPY[21-31] 50%TFE dαN(i,i+1)之NOE連結。	89
圖4.35: hNPY[21-31] 50%TFE dβN(i,i+1)之NOE連結。	90
圖4.36: hNPY[21-31] 50%TFE dNN(i,i+1)之NOE連結。	91
圖4.37: hNPY[21-31] 50%TFE芳香環質子與其他質子間的NOE。 92
圖4.38: hNPY[21-31] 50%TFE dαN(i,i+2)之NOE連結。	93
圖4.39: hNPY[21-31] 50%TFE dαN(i,i+3)之NOE連結。	94
圖4.40: hNPY[21-31] 50%TFE dαN(i,i+4)之NOE連結。	95
圖4.41: hNPY[21-31] 50%TFE dβN(i,i+2)之NOE連結。	96
圖4.42: hNPY[21-31] 50%TFE dβN(i,i+3)之NOE連結。	97
圖4.43: hNPY[21-31] 50%TFE dβN(i,i+4)之NOE連結。	98
圖4.44: hNPY[21-31] 50%TFE dαβ(i,i+2)與dαβ(i,i+3)之NOE連結。 99
圖4.45: hNPY[21-31]在50%TFE,所有NOE連結。	101
圖4.46: hNPY[21-31]在50%TFE 所有NH-αH交叉峰。        102
圖4.47: hNPY[21-31]在50%TFE [13C,1H]-HSQC光譜之一。     103
圖4.48: hNPY[21-31]之50%TFE [13C,1H]-HSQC光譜之二。     104
圖4.49: hNPY[21-31]之50%TFE[13C,1H]-HSQC光譜之三。	105
圖4.50: hNPY[21-31]之 [13C,1H]-HSQC光譜之三。	106
圖5.1: hNPY[21-31]之CD各比例TFE變化圖。	114
圖5.2: hNPY[21-31]之100%水溶液αH Chemical Shift Index。	115
圖5.3: hNPY[21-31]之50%TFE αH Chemical Shift Index。	115
圖5.4: hNPY[21-31]之100%水溶液13αC Chemical Shift Index。   116
圖5.5: hNPY[21-31]之50%TFE 13αC Chemical Shift Index。	116
圖5.6: hNPY[21-31]之100%水溶液13βC Chemical Shift Index。   117
圖5.7: hNPY[21-31]之50%TFE 13βC Chemical Shift Index。	117
圖5.8: hNPY[21-31]之50%TFE與100%水αH CSI。	118
圖5.9: hNPY[21-31]之50%TFE與100%水  13αC CSI。	118
圖5.10: hNPY[21-31]之50%TFE與100%水13βC CSI。	119
圖5.11: hNPY[21-31]水溶液經由XPLOR計算結構。	119
圖5.12: hNPY[21-31] 50%TFE 之XPLOR計算結構。	120
圖5.13: hNPY[21-31] 50%TFE兩性螺旋之一。	121
圖5.14: hNPY[21-31] 50%TFE兩性螺旋之二。	121








表格索引
表2.1:積運算子之一些重要轉換。                             22
表3.1:最佳去保護時間及耦合時間。                          35
表3.2:合成hNPY[21-31]所需之藥品用量。                    35
表3.3: HPLC純化之梯度。                                  39
表4.1:h NPY[21-31]水溶液之1H化學位移。                    78
表4.2:h NPY[21-31]水溶液之13C化學位移。                   79
表4.3 h NPY[21-31]50%TFE溶液之1H化學位移。	107
表4.4 h NPY[21-31]50%TFE溶液之13C化學位移。	108
表5.1: hNPY[21-31]之CD各比例TFE溶液與二級結構含量表。 122
表5.2: hNPY[21-31]在50%TFE溶液下, helix之RMSD值。	122



 











              
 縮寫表
ACN                Acetonitrile
Ar                  Argon
aPP                 avian Pancreatic Polypeptide
bPP                 bovine Pancreatic Polypeptide
Boc                 tert-butyloxycarbony
CH2Cl2                      Dichloromethane
CD                 Circular dichroism
COSY              Correlation Spectroscopy
CSI                Chemical Shift Index
DMF               N,N-Dimethyl Formamdie
DCl                Deuterium Chloride
D2O                Deuterum Oxide
EtOH               Ethanol
EDT                1,2-ethanedithiol
Fmoc               9-fluorenylmethyloxycarbonyl
GPCRs             G-Protein couple Receptors
HCl                Hydrochloric acid
hNPY              Human Neuropeptide Y
hPP                human Pancreatic Polypeptide
HPLC              High performance liquid chromatography 
HOHAHA           Homonuclear Hartmann Hahn
HSQC              Heteronuclear Single Quantum Correlation
Nmm               4-Methylmorpholine
N2                           Nitrogen
NaOH              Sodium hydroxide
NaOD              Sodium Deuteroxide
NPY               Neuropeptide Y
NMR              Nuclear magnetic resonance
NOESY            Nuclear Overhauser Effect Spectroscopy
NOE               Nuclear overhauser enhancement
PP                 Pancreatic Polypeptide
PYY               Peptide Tyrosine-tyrosine
pNPY              porcine Neuropeptide Y
RMSD             Root Mean Square Deviation
SPPS              Solid Phase Peptide Synthesis
TFA               Trifluoroacetic acid
TIS                Triethylsilane
TFE               Trifluoroethanol
TMS               Tetramethylsilane
TSP                Sodium-3-trimethylsilylpropionate
TOCSY             Total Correlation Spectroscopy
Y  Tyr              Tyrosin
參考文獻
六、	參考資料

1.	Bader, R.; Bettio, A.; Beck-Sickinger, A. G.; and Zerbe, O. “Structure and Dynamics of Micelle-bound Neuropeptide Y: Comparison with Unligated NPY and Implications for Receptors Selection.” J. Mol. Biol. 2001, 305, 307-329.
2.	McLean, L. R.; Buck, S. H.; Krstenansky, J. L. “Examination of the Role of the Amphiphatic α-Helix in the Interaction of Neuropeptide Y and Active Cylic Analogues with Cell Membrane Receptors and dimyristolphosphatidylcholine” Biochemisry, 1990, 29, 2016-2022.
3.	Zhou, N. E.; Zhu, Bing-Yan; Sykes, B. D.; Hodges, R. S. “Relationship between Amide Ptoton Chemical Shifts and Hydrogen Bonding in Amphipathic α-Helical Peptides.” J. Am. Chem. Soc., 1992, 11, 4321-4326.
4.	Darbon, H.; Bernassau, J. M.; Deleuze, C.; Chenu, J.; Roussel, A.; Cambillau, C. “Solution conformation of human Neuropeptide Y by 1H nuclear magnetic resonance and restrained molecular dynamics.” Eur. J. Biochem. 1992, 209, 765-771.
5.	Bettio, R.; Dinger, M. C.; and Beck-Sickinger, A. G. “The neuropeptide Y monomer in solution is not folded in the pancreatic-polypeptide fold.” Protein Science. 2002, 11, 1834-1844.
6.	Cowley, D. J.; Hoflack, J. M.; Pelton, J. T.; Saudek, V. “Structure of neuropeptide Y dimer in solution.” Eur. J. Biochem. 1992, 205, 1099-1106.
7.	Bettio, A.; Beck-Sickinger, A. G. “Biophysical Methods to Study Ligand–Receptor Interactions of Neuropeptide Y.” Biopolymers (Peptide Science), 2001, 60, 420–437.
8.	Novabiochem®2004/5 Catalog; Merck
9.	Rodger, A.; and B. Nordén "Circular dichroism and linear dichroism." Oxford (1997).
10.	Lightner, D. A.; J. E. Gurst, “Organic conformational analysis and stereochemistry from circular dichroism spectroscopy.” John Wiley & Sons, Inc. (2000).
11.	Velluz, L.; M. Legrand, M. Grosjean, “Optical circular dichroism.” Academic Press, Inc., (1965).
12.	Jirgensons, B.; A. K. Philadelphia; G. F. S. Evanston; H. G. W. Berlin, “Optical rotatory dispersion of proteins and other macromolecules.” Springer-Verlag New York Inc., (1969).
13.	Charney, E. “The molecular basis of optical activity: Optical rotatory dispersion and circular dichroism.” John Wiley & Sons, Inc. (1979).
14.	Fasman, G. D. “Circular dichroism and the conformation analysis of biomolecules.” Plenum Press. (1996).
15.	程郁郁,含假異胞嘧啶及其衍生物之去氧寡核酸鏈在水溶液中形成核酸三螺旋之研究,碩士論文,中國文化大學應用化學研究所,1997。
16.	Nakanishi, K., N. Berova, Woody, R. W. Circular dichroism principles and applications. VCH Publishers, Inc. (1994).
17.	江建民 應用螢光及旋光技術於生命薄膜的研究 科儀新知, 1997,  18(6), 44-57.
18.	Yang, J. T.; C. -S. C. Wu; H. M. Martinez. “Calculation of protein conformation from circular dichroism.” Meth. Enzymol., 1986, 130, 208-269.
19.	Greenfield, N. J. “Methods to Estimate the Conformation of Proteins and Polypeptides from Circular Dichroism Data” Anal.Biochem., 1986,235, 1-10.
20.	Copeland, R. A. Methods for protein analysis. Chapman & Hall, 1994.
21.	余靖,李長欣 核磁共振專輯(二), 1998, 國科會精密儀器發展中心。
22.	Cavanagh, J.; Fairbrother, W. J.; Palmer III, A. G.; Skelton, N. J. Protein NMR Spectroscopy :principles and practice (1996).
23.	Sorensen, O. W.; Eich, G. W.; Levitt, M. H.; Bodenhausen. G.; and Ernst, R. R. Progr. “Product operator formalism for the description of NMR pulse experiments.” NMR Spectrosc.1983, 16, 163-192.
24.	Cavanagh, J.; Fairbrother, W. J.; Palmer III, A. G.; Skelton, N. J. Protein NMR Spectroscopy :principles and practice 1996.
25.	Jeener, J. (Ampere Summer School, Basko Polje,Yugoslavia, 1971)
26.	Bax, A.; Davis, D. G. “Assignment of complex proton NMR spectra via two-dimensional homonuclear Hartmann-Hahn spectroscopy.” J. Am. Chem. Soc. 1985, 107, 2820.
27.	Braunschweilwe, L.;Ernst, R. R. J. Magn. Reson. 1983, 53, 521.
28.	Bax, A.; Davis, D. G. J. Magn. Reson. 1985, 65, 355.
29.	Ösapay, K.; Case, D. A. “A new analysis of proton chemical shifts in proteins.” J. Am. Chem. Soc. 1991, 113, 9436.
30.	Ösapay, K.; Case, D. A. “Analysis of proton chemical shifts in regular secondary structure of proteins.” J. Biomol. NMR. 1994, 4, 215.
31.	Wishart, D. S.; Sykes, B. D.; Richards, F. M. “The chemical shift index: a fast and simple method for the assignment of protein secondary structure through NMR spectroscopy.” Biochemistry, 1992, 31, 1647-1651.
32.	Wishart, D. S.; Sykes, B. D. “The 13C Chemical-Shift Index: A simple method for the identification of protein secondary structure using 13C chemical-shift data.” J. Biomol. NMR. 1994, 4, 171-180.
33.	Wuthrich, K. NMR of Proteins and Nucleic Acids. Wiley, New York, NY. (1986)
34.	Wuthrich et al., 1982; Billeter et al., 1982; Wuthrich, 1983
35.	Millhauser, G. L. “Views of Helical Peptides: A Proposal for the Position of 310-Helix along the Thermodynamic Folding Pathway.” Biochemistry, 1995, 34, 3873-3877.
36.	Chu, S. S.;Velde, D. V.; Shobe, D.; Balse, P.; Doughty, M. B. “Conformational Properties of the Proline Region of Porcine Neuropeptide Y by CD and 1H-NMR Spectroscopy.” Biopolymers, 1995, 35, 583-593.
37.	Reymond, M. T.; Merutka, G.; Dyson, H. J.; Wright, P. E. “Folding propensities of peptide fragments of myoglobin.” Protein Science, 1997, 6, 706-716.
38.	Lerch, M.; Kamimori, H.; Folkers, G.; Aguilar, Marie-Isabel; Beck-Sickinger, A. G.; Zerbe, O. “ “Strongly Altered Receptor Binding Properties in PP and NPY Chimeras Are Accompanied by Changes in Structure and Membrane Binding.” Biochemistry, 2005, 44, 925-9264
39.	Saudek, V.; Pelton, J. T. “Sequence-specific proton NMR assignment and secondary structure of neuropeptide Y in aqueous solution.” Biochemistry, 1990, 29, 4509-4515.
40.	Povey, J. F.; Smales, M. C.; Hassard, S. J.; Howard, M. J. “Comparison of the effects of 2,2,2-trifluoroethanol on peptide and protein structure and function.” J. Struct. Biol. 2007, 157, 329-338.
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